葉酸的測定方法
微生物法
1.原理
葉酸是酪乳酸桿菌（Lactobacillus casei, L. C,ATCC7469）生長所必需的營養素。在一定條件下，L.C的生長繁殖與培養基中葉酸含量呈正比關系，細菌增殖的量以光密度值計，通過與標準曲線相比較，計算出樣品中葉酸的含量。
2.適用范圍
參考《Methods of Vitamin Assay》，第4版。本方法適用于各類食物中葉酸的測定。檢測限為0.1ng。
3.儀器與設備
（1） 恒溫培養箱
（2） 離心機
（3） 高壓消毒鍋
（4） 震蕩器
（5） 接種針和接種環
（6） 分光光度計
4.試劑
除特殊說明外，本實驗中所有試劑均為分析純，水為蒸餾水。
（1） 菌種：酪乳酸桿菌（Lactobacillus casei, L.C, ATCC 7469）
（2） 磷酸緩沖液(0.05mol/L, pH6.8):稱取4.35gNa3PO4·12H2O,10.39gNa2HPO4·7H2O溶解于800ml水中。臨用前用約5g抗壞血酸調節pH至6.8。（注：葉酸對光、熱敏感，易被氧化破壞，抗壞血酸有助于保護葉酸被氧化。）
（3） 雞胰酶溶液：稱取100mg干燥的雞胰酶（Difco公司）（注：含有葉酸軛合酶，用于水解葉酸多谷氨酸鹽），加入20ml磷酸緩沖液制成勻漿，3000rpm離心10min,取上清液備用。臨用前現配。
（4）蛋白酶-淀粉酶溶液：分別稱取200mg蛋白酶（Sigma公司）和淀粉酶（Sigma公司），加入20ml磷酸緩沖液制成勻漿，離心3000rpm10min,取上清液備用。臨用前配制。
（5） 2+8乙醇溶液：量取20ml無水乙醇溶液，加入80ml水混勻。
（6） 01mol/L NaOH: 稱取0.4g氫氧化鈉，加2+8乙醇溶液溶解并稀釋至1L。
（7） 10mol/L NaOH。稱取400g氫氧化鈉，加水溶解并稀釋至1L。
（8）葉酸標準儲備液（200mg/ml）：準確稱取200mg葉酸標準品（Sigma公司，純度大于98%），用0.01mol/LNaOH溶解并定容至1L。儲存于棕色瓶中。
（9） 葉酸標準中間液（200ng/ml）：準確吸取1.0ml葉酸標準儲備液，用0.01mol/LNaOH溶解并定容至1L。儲存于棕色瓶中。待標定。
標定：準確吸取1ml葉酸標準中間液，用0.1mol/LNaOH定容至10ml。以0.1mol/LNaOH調零點，比色杯厚度1cm，波長256nm，測定3次紫外吸光度值，取平均值，按下式計算標準中間液濃度。X1=
 `A
 ×M ×10×106
      …………………(1)
 
E
 

式中：
X1 -- 葉酸標準中間液濃度，ng/ml；
A -- 標準中間液平均紫外吸光度值；
E -- 摩爾消光系數24,500；
M -- 葉酸分子量441.42；
10-- 測定紫外吸光度值時的稀釋倍數；
106 -- 由g/L換算成ng/ml的換算系數。
（10） 葉酸標準工作液（0.2ng/ml）:準確吸取1.0ml葉酸標準中間液，用磷酸緩沖液稀釋定容至1L。
（11） 2.4mol/L HCl：量取20ml濃鹽酸，加水稀釋至100ml。
（12） 酶解酪蛋白溶液：將8g碳酸氫鈉溶解于1L水中，加入60g去維生素酪蛋白（Sigma公司），用10mol/LNaOH調節pH至8.0（調pH時應小心，不要過堿后再加酸反復調節，避免酪蛋白結塊）。加入300mg胰酶，攪拌20min，使胰酶混勻充分。再加入2.5ml甲苯，置37℃恒溫箱酶解48～72h（此步驟是將酪蛋白酶解為L.C可以利用的小分子肽。酶解時間不易超過72h，如時間過長，配成的培養基不利于細菌生長）。將酪蛋白液從恒溫箱中取出，121℃高壓30min以終止反應并去除甲苯。冷卻，加10g硅藻土攪拌，用墊有濾紙的布氏漏斗過濾。向濾液中加入約60ml冰乙酸調節pH至3.7。稱取活性炭12g，加入濾液中攪拌10min，用布氏漏斗過濾，重復三次。每次過濾時，布氏漏斗內加有10g硅藻土協助過濾。最后濾液用水稀釋至1200ml，4℃冰箱保存1年（活性碳可吸附酪蛋白中的葉酸以減少試劑空白，同時也可吸附肽及氨基酸，應注意控制攪拌時間）。取10ml酶解后的酪蛋白溶液加入已稱重的蒸發皿中，沸水浴蒸發至干。將蒸發皿置于100℃恒溫烤箱內干燥至恒重，在干燥器中冷卻至室溫。稱量蒸發皿的重量，蒸發皿內固體重量，如固體重量小于400mg，即每毫升酪蛋白溶液中固體含量<40mg，則棄除酪蛋白液，重新制備。
（13） 黃嘌呤溶液：取0.4g黃嘌呤，加入10ml氨水，加熱溶解，用水稀釋至100ml。冰箱保存。
（14） 腺嘌呤-鳥嘌呤-尿嘧啶：分別稱取硫酸腺嘌呤，鹽酸鳥嘌呤和尿嘧啶各0.2g，加入2.4 mol/LHCl溶液10ml，加熱溶解，用水稀釋至100ml，室溫貯存。
（15） 乙酸緩沖液（1.7mol/L,pH4.5）：38.65g無水乙酸鈉，19.8ml冰乙酸，加水稀釋至500ml。
（16） 維生素溶液：取10mg核黃素溶解于40ml乙酸緩沖液中。取0.2mg生物素，2.5mgNaHCO3，20mg對氨基苯甲酸，40mg鹽酸吡多醇，4mg鹽酸硫胺素，8mg泛酸鈣，8mg尼克酸溶解于50ml水中。將上述兩種溶液混合，加水至100ml。
（17） 吐溫-80溶液：將2g吐溫-80加入100ml 45℃水中，混勻。
（18） 還原型谷胱甘肽溶液：取0.1g還原型谷胱甘肽，加水至100ml.
（19） 甲鹽溶液：稱取5g磷酸氫二鉀和2g磷酸二氫鉀，加水溶解至100ml，液面上加入少許甲苯保存。
（20） 乙鹽溶液：稱取2 g硫酸鎂，0.5 g硫酸亞鐵和0.5 g硫酸錳，加水至100 ml，液面上加少許甲苯保存。
（21） 基礎培養基：按下表配制，最終定容至500ml。酶解酪蛋白
 100ml
 L-鹽酸半胱氨酸
 0.2 g
 
腺嘌呤-鳥嘌呤-尿嘧啶
 2.5 ml
 色氨酸
 0.2 g
 
黃嘌呤溶液
 2.5 ml
 還原型谷胱甘肽溶液
 2.5ml
 
維生素溶液
 5ml
 葡萄糖
 20 g
 
吐溫-80溶液
 2.5 ml
 乙酸鈉
 20 g
 
L-天冬氨酸
 0.3 g
 甲鹽溶液
 2.5ml
 

加水至250ml，攪拌，用10mol/LnaOH溶液調節pH 6.8±0.1，然后加入乙鹽溶液2.5 ml，磷酸緩沖液200ml,用水補至500ml。4℃冰箱內可保存一周 。
(甲、乙鹽混合后易產生沉淀，所以配培養基時不可同時加入，加入甲鹽后先調節pH再加入乙鹽。基礎培養基也可直接選購DIFCO公司生產的葉酸測定用培養基)
（22） 瓊脂培養基：葡萄糖
 1 g
 甲鹽溶液
 0.2 ml
 
蛋白胨
 0.8 g
 乙鹽溶液
 0.2 ml
 
酵母提取物干粉
 0.2 g
 瓊脂
 1.2g
 
乙酸鈉(NaAc·3H2O)
 1.7 g
 
 
 

加水至100ml，置水浴煮至瓊脂完全熔化，調節pH 6.8±0.1。盡快倒入試管中，每管3～5ml，塞上棉塞，121℃高壓滅菌15min,取出后直立試管，冷卻至室溫.于冰箱內保存。
5.菌種制備與保存
（1） 儲備菌種的制備：將L.C純菌種轉接至2個或多個瓊脂培養基管中。37 ℃±0.5℃恒溫培養箱中培養16～24h。貯于冰箱內，每周轉種一次留作儲備菌種。
（2） 種子培養液的制備：取2 ml葉酸標準使用液和10ml基礎培養基，混勻，分裝至4支5ml離心管中，塞上棉塞，121℃高壓滅菌15 min，實驗時現制。
6.操作步驟
所有操作均需避光進行
6.1 樣品制備
（1） 強化劑型樣品：稱取0.1～0.5 g樣品（約含葉酸100～300 ng）于100ml錐形瓶中，加入50ml磷酸緩沖液，混勻。121℃高壓水解15 min。定容至100ml，過濾。
（2） 果蔬類：稱取樣品0.2～2g（約含葉酸100～300ng），加磷酸緩沖液經高壓水解后過濾，殘渣用同樣緩沖液再次高壓，過濾。合并兩次濾液，定容至100ml。
（3） 谷、肉、蛋、魚、豆、奶類等富含淀粉和/或蛋白類樣品：稱取樣品0.1-2g（約含葉酸100～300ng），加磷酸緩沖液高壓水解后， 冷卻。加入1 ml雞胰酶和1 ml蛋白酶-淀粉酶液，1ml甲苯，充分混合，置于37 ℃±0.5℃恒溫箱內酶解16～20h。酶解后定容至100ml過濾。另取一支試管，加入1ml雞胰酶，1ml蛋白酶-淀粉酶和磷酸緩沖液，作酶空白。
（4） 口服液、飲料、果汁等樣品：稱取樣品0.5～2 ml（約含葉酸100～300ng），加磷酸緩沖液高壓水解后，冷卻，加入1ml雞胰酶，1 ml甲苯，充分混合，置于37 ℃±0.5℃恒溫箱內酶解16～20h。酶解后定容至100ml，過濾。另取一支試管，加入1 ml雞胰酶和磷酸緩沖液，作酶空白。
6.2根據樣品葉酸含量，將上述濾液用磷酸緩沖液稀釋到一定倍數，使葉酸終濃度為0.1～0.4 ng/ml。
6.3樣品管的制備：取4支試管，每支試管中分別加入稀釋后樣品液1.0、2.0、3.0、4.0 ml，補充水至體積為5.0ml，加入5ml基礎培養基，混勻。同樣制作酶空白管。
6.4 滅菌：將以上標準系列管、樣品管和酶空白管全部塞上棉塞，121℃高壓滅菌15 min。
6.5標準系列管的制備：取試管分別加入葉酸標準工作液0.0、0.5、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0ml,相當于葉酸含量0，0.1，0.2，0.4，0.6，0.8，1.0ng，加水補至體積為5.0ml，再加5 ml基礎培養基，混勻。如樣品管一樣進行滅菌。標準系列管進行平行測定。
6.6 接種
（1）接種液的制備：接種前一天，用滅菌的接種針將菌種由儲備菌種管中轉種至2支已滅菌的種子培養液中，37℃±0.5℃恒溫培養箱中培養16～24h。混懸種子培養液，無菌操作下用接種針管將20滴種子培養液轉移至另2支無菌的種子培養液中，37℃±0.5℃再培養6h。震蕩混勻，制成菌種混懸液。立即使用。（葉酸是L.C生長所必需的，但是如果培養基中葉酸含量過高，細菌可在體內貯存，使測定空白值，影響細菌生長曲線。將接種液轉種再培養6h，有利于消耗細菌體內貯存的葉酸。）
（2）接種：在無菌操作條件下向每支已滅菌的標準系列管、樣品管和酶空白管接種一滴上述接種液（注意應直接滴在培養基內），混勻。留一支標準0管不接種，用于測定光密度時調零。
6.7 培養：置于37 ℃±0.5 ℃恒溫培養箱中培養20～40 h。
6.8 測定：用分光光度計，在波長540 nm下，以未接種的標準0管調節零點，測定標準管、樣品管和酶空白管的光密度值。
7.計算
（1） 繪制標準曲線：以標準系列管中葉酸含量為橫坐標，光密度值為縱坐標，繪制葉酸標準曲線。
（2）結果計算：根據樣品管和酶空白管的光密度值，從標準曲線上查得相應的葉酸含量，按下式計算。X =
 （c -P）×V1×F
 ×
 100
 
m × V 2
 1000
 

式中：
X--樣品中葉酸含量，μg/100g；
c--從標準曲線上查得樣品測定管中葉酸含量，ng；
P--從標準曲線上查得酶空白管中葉酸含量，ng；
V1--樣品制備時定容體積，ml；
F--稀釋倍數；
V2--制備樣品測定管時加入的樣品液體積，ml；
m--樣品質量，g；
100/1000──樣品含量由ng/g換算成μg/100g的系數。
8.注意事項
（1） 同一實驗室平行測定或重復測定結果相對偏差絕對值<10%。
（2） 微生物法的測定結果為總葉酸含量。
（3） 微生物法測定葉酸常用的菌種除L.C外還有糞鏈球菌（Streptococcus faecalis, S.F.ATCC8043）。用L.C測定靈敏度高，用S.F.測定重現性好。本方法選用L.C，實驗條件以適宜酪乳酸桿菌的生長條件而定。
（4）常用的酪蛋白處理方法有酶水解法、酸水解法和堿水解法，由于葉酸在堿性條件下相對穩定，所以用堿處理酪蛋白不能完全破壞葉酸，使培養基中葉酸含量偏高，標準空白值高，線性差。酸水解法和酶水解法均可有效去除葉酸，降解蛋白，使細菌生長曲線在0～1ng范圍內線性良好，其中實驗證明酶水解法更好。
（5） 培養基的pH對細菌生長很重要，pH6.8～7.2，生長曲線最佳。PH過低或過高均不利于細菌生長。
（6） 本方法配制的培養基和Difico公司的葉酸培養基比較，標準曲線線性基本一致，對樣品檢測結果基本一致。
（7）食物中葉酸多以多谷氨酸鹽形式存在，而L.C只能利用葉酸單、雙、三谷氨酸鹽，所以對天然食品處理時先用軛合酶對葉酸進行降解。常用的軛合酶來源有血漿、雞胰酶和豬腎酶。豬腎酶需從市售豬腎中提取，操作復雜，提取后對酶的堅定相對困難，且重復性差，酶的用量難于控制。雞胰酶可從Difco公司購買，可直接使用，重復性好。雞胰酶的用量與葉酸測定結果相關，以往報告中認為水解200ng葉酸需加入0.5～1mg雞胰酶。也有人認為在pH7.0的環境下增加酶的用量可提高葉酸水解率。本實驗室認為水解200ng葉酸，雞胰酶用量宜控制在3～5mg左右，過高可降低水解效果。
（8）軛合酶在應用中也有其局限性。天然食物中往往也含有軛合酶，在食物貯藏、運輸過程中葉酸衍生物之間可發生相互轉化，使外源性軛合酶作用下降；并且蔬菜水果存在一些酶的干擾物質也影響酶的活性，如檸檬酸、鞣酸等。所以測定中樣品需注意保鮮，及時測定；樣品處理方法也應視樣品性質而定。
（9）蛋白酶、淀粉酶的應用可將包裹于蛋白、淀粉之間或與蛋白結合的葉酸釋放，有助于樣品檢測。蛋白酶、淀粉酶、雞胰酶聯合應用，水解效力大于3酶效力之和。